{"id":3003,"date":"2024-07-18T18:58:45","date_gmt":"2024-07-18T18:58:45","guid":{"rendered":"https:\/\/agroreforest.eu\/?p=3003"},"modified":"2024-07-19T08:34:26","modified_gmt":"2024-07-19T08:34:26","slug":"monitoring-in-german3-living-lab-as-per-work-package-3-of-reforest-project-from-29-04-2024-to-03-05-2024","status":"publish","type":"post","link":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/monitoring-in-german3-living-lab-as-per-work-package-3-of-reforest-project-from-29-04-2024-to-03-05-2024\/","title":{"rendered":"Monitoring im German Living Lab im Rahmen von Arbeitspaket 3 des ReForest-Projekts vom 29.04.2024 bis 03.05.2024"},"content":{"rendered":"

Autor: Pawe\u0142 Radzikowski radzikpawe@gmail.com<\/a><\/p>\n\n\n\n

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Tag 1 der \u00dcberwachung (29.04.2024):<\/strong> Nach der Ankunft im deutschen Living Lab traf Herr Pawe\u0142 Radzikowski von der Ogolnopolskie Stowarzyszenie Agrolesnictwa (OSA, Polnischer Agroforstverband) mit Frau Janine Raabe, der Landwirtin von Hof Lebensberg<\/a>. Die genauen Standorte der Probenahmestellen wurden festgelegt, und es wurden Kontrollstellen bestimmt. Die Erhebungen wurden in zwei Agroforstsystemen durchgef\u00fchrt: einem Mischobst- und einem Mischnuss-System. Die Kontrolle f\u00fcr das Nussmischsystem war ein angrenzendes Feld mit einer Futterpflanze, w\u00e4hrend das Nussmischsystem ein angrenzendes unbepflanztes Feld war. W\u00e4hrend der Gespr\u00e4che vor Ort wurde beschlossen, das urspr\u00fcnglich in Aufgabe 3.2 entwickelte Probenahmeprotokoll an die Standortbedingungen anzupassen. Anstelle eines Gef\u00e4lles mit vier Abst\u00e4nden zu den B\u00e4umen wurden zwei Abst\u00e4nde gew\u00e4hlt: einer unmittelbar neben den B\u00e4umen und der andere in der Mitte zwischen ihnen. Diese \u00c4nderung war notwendig, weil die B\u00e4ume erst ein oder zwei Jahre vor Beginn der \u00dcberwachung gepflanzt worden waren und ihre Auswirkungen daher vor allem in geringer Entfernung sp\u00fcrbar waren. Indirekte Entfernungen sollten in diesem Zusammenhang keine Rolle spielen.<\/p>\n\n\n\n

In beiden Systemen und den entsprechenden Kontrollfl\u00e4chen wurden 30 x 10 Meter gro\u00dfe Testfl\u00e4chen angelegt. Die L\u00e4nge von 30 Metern wurde gew\u00e4hlt, weil f\u00fcr bestimmte Artenvielfaltstichproben ein Abstand von mindestens 10 Metern zwischen den Fl\u00e4chen erforderlich ist. Unter der Annahme, dass f\u00fcr jede Variante vier Wiederholungen erw\u00fcnscht sind, w\u00fcrden diese entlang eines einzigen Transekts in Abst\u00e4nden von 0 m, 10 m, 20 m und 30 m angeordnet. Die Breite von 10 Metern wurde aufgrund des 20-Meter-Abstands zwischen den Baumreihen gew\u00e4hlt. Die Probenahme wurde so geplant, dass das Transekt entlang der B\u00e4ume verlief und die Mitte des Ackers erreichte (siehe Abb. 1 bis 3). Die gleiche Anordnung wurde auch f\u00fcr die Kontrollfl\u00e4che gew\u00e4hlt, obwohl das Feld durchgehend einheitlich war.<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 2 Testparzellen im Mischobstsystem und in der Kontrolle<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 3 Genaue Lage der Probenahmestellen im Mischnuss-System<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 4 Messung der L\u00e4nge und Breite der Testparzelle<\/p>\n\n\n\n

Die \u00dcberwachung begann mit den am wenigsten invasiven Methoden, n\u00e4mlich dem Sammeln von Insekten. Diese Erhebung wurde in drei 10-Meter-Transekten in jeder Untersuchungsfl\u00e4che durchgef\u00fchrt (Abb. 5). Es wurde ein spezielles entomologisches Netz mit einem 1 m langen Stiel und einer herzf\u00f6rmigen \u00d6ffnung von 30 x 40 cm verwendet. Diese Konstruktion erleichterte das Sammeln von Insekten sowohl in der hohen Vegetation als auch auf bodennahen Fl\u00e4chen. Der Auffangbeutel des Netzes besteht aus feinem Maschengewebe, das mit einer stabilen Stoffh\u00fclle verst\u00e4rkt ist (Abb. 6). Die w\u00e4hrend der Erhebung gesammelten Insekten wurden in 100-ml-Beh\u00e4lter umgef\u00fcllt, euthanasiert und mit Ethanol 75% konserviert (Abb. 7). Insgesamt wurden 36 Proben gesammelt. Die Identifizierung dieser Insekten wird zu einem sp\u00e4teren Zeitpunkt im Rahmen von Aufgabe 3.2 durchgef\u00fchrt.<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 5 Lage der Transekte f\u00fcr die Insektensammlung<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 6 Entomologisches Netz im Einsatz<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 7 Mit einem entomologischen Netz gesammelte Proben<\/p>\n\n\n\n

Am ersten Tag der \u00dcberwachung bestand eine weitere Aufgabe darin, in den folgenden f\u00fcnf Tagen Fallen zum Sammeln von Insekten aufzustellen. Es wurden zwei Arten von Fallen eingesetzt: Barber-Erdfallen und gelbe Best\u00e4uberfallen. Diese Fallen wurden in Abst\u00e4nden von 10 Metern entlang der festgelegten Transekte aufgestellt, und zwar drei Fallen pro Variante (Abb. 8). Die Barber-Erdfallen mit einem Durchmesser von 10 cm waren f\u00fcr den effektiven Fang von Bodeninsekten konzipiert. Die gelben Best\u00e4uberfallen mit einem Durchmesser von 30 cm wurden aufgrund der geringen H\u00f6he der Vegetation direkt auf dem Boden aufgestellt. Beide Fallentypen wurden zu zwei Dritteln mit einer L\u00f6sung aus sauberem Wasser und geruchlosem Reinigungsmittel gef\u00fcllt (Abb. 9). Diese L\u00f6sungsformulierung gew\u00e4hrleistete ein schnelles Ertrinken der Wirbellosen und verhinderte gleichzeitig ein \u00dcberlaufen bei starkem Regen, ohne dass die Fallen angesichts der kurzen Sammelzeit abgedeckt werden mussten. Der Wasserstand wurde t\u00e4glich aufgef\u00fcllt, um eine vollst\u00e4ndige Verdunstung zu verhindern.<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 8 Lage der Barber-Fallen und der gelben Schalen in der Mischnussanlage<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 9 Das Verfahren zum Setzen von Gelbschalen und Barber-Fallen
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Tag 2 der \u00dcberwachung <\/strong><\/a>(23.04.2024):<\/strong> Die Bewertung konzentrierte sich auf die Artenvielfalt der Flora und die Prim\u00e4rproduktion. Innerhalb jedes der acht Transekte wurden vier Punkte f\u00fcr phytosoziologische Fotos mit einem botanischen Rahmen von 1\u00d71 Meter ausgew\u00e4hlt (Abb. 10). Alle Pflanzenarten wurden identifiziert, und ihre H\u00e4ufigkeit wurde gem\u00e4\u00df den empfohlenen Feldprotokollen gesch\u00e4tzt. Die Daten wurden auf Feldformularen festgehalten (Abb. 11).<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 10 Verteilung der Artenvielfalt und der Biomasseproben im gemischten Nusssystem<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 11 Botanischer Rahmen und Feldformular f\u00fcr die Bewertung der Flora<\/p>\n\n\n\n

Die Biomasse wurde innerhalb desselben Meterrahmens geschnitten, geerntet und gewogen (Abb. 12). Dies erm\u00f6glichte die Sch\u00e4tzung des Futterpflanzenertrags f\u00fcr Weideh\u00fchner oder die Bewertung der nat\u00fcrlichen Produktivit\u00e4t des \u00d6kosystems (Prim\u00e4rproduktion), wenn die Biomasse nicht geerntet worden war. Zum Zeitpunkt des Monitorings wurde weder der Ertrag der vorhandenen B\u00e4ume ermittelt, noch wurden die Getreidefelder einges\u00e4t. Zus\u00e4tzlich wurde eine fotografische Dokumentation der einzelnen Pflanzenarten in jedem System und ihrer Kontrolle durchgef\u00fchrt (Abb. 13). Diese Fotos wurden auf iNaturalist hochgeladen, um die Artenbestimmung mithilfe von Algorithmen und nach R\u00fccksprache mit Spezialisten zu \u00fcberpr\u00fcfen. Die Beobachtungen wurden mit Geotags versehen, um einen weltweiten Vergleich der Artenvielfalt zu erm\u00f6glichen (Abb. 14).<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 12 Geerntete Futterbiomasse pro 1 m2<\/sup><\/p>\n\n\n\n

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Abb. 13 Individuelle fotografische Dokumentation von Pflanzen<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 14 Auf iNaturalist eingegebene Beobachtungen<\/p>\n\n\n\n

Tag 3 der \u00dcberwachung<\/strong> (01.05.2024)<\/strong> - Die Aktivit\u00e4ten konzentrierten sich auf die Untersuchung der Bodentiefe und das Sammeln von Regenw\u00fcrmern. In den Bereichen, in denen am Vortag Biomasse gesammelt worden war, wurden 25 x 25 x 25 cm gro\u00dfe Bodenbl\u00f6cke ausgehoben (Abb. 15). Der Boden wurde vorsichtig auf einer Platte abgetrennt und weiter ausgegraben, um Zugang zum Unterboden zu erhalten. F\u00fcr tiefere Bodenschichten wurde bei Bedarf ein Egner-Probenehmer eingesetzt (Abb. 16).<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 15 Regenwurmsammelstellen und Bodentiefenmessungen<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 16 Messung der Bodentiefe<\/p>\n\n\n\n

Der auf der Folie ausgebreitete Boden wurde manuell gesiebt, um Regenw\u00fcrmer zu extrahieren (Abb. 17). Die entnommenen Exemplare wurden in mit 75%-Alkohol gef\u00fcllten Beh\u00e4ltern aufbewahrt, um sie anschlie\u00dfend zu wiegen und die Art zu bestimmen (Abb. 18).<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 17 Schneiden des Bodenblocks und Sieben des Bodens nach Regenw\u00fcrmern<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 18 Extraktion von Regenw\u00fcrmern<\/p>\n\n\n\n

Tag 4 der \u00dcberwachung (2. Mai 2024)<\/strong> - Es wurden Messungen der Sch\u00fcttdichte und der Durchl\u00e4ssigkeit des Bodens durchgef\u00fchrt. Die Proben wurden in dreifacher Ausfertigung an jeder vorgesehenen Stelle entnommen (Abb. 19). Vor der Probenahme wurden kleine Teile der Grasnarbe mit einem Spaten abgetragen. F\u00fcr diese Untersuchungen wurden zwei Arten von Zylindern verwendet. Kleine Zylinder mit einem Durchmesser von 5 cm wurden in den Boden gerammt, um Proben f\u00fcr die Sch\u00fcttdichte zu erhalten (Abb. 20). Die Proben wurden an beiden Enden mit Deckeln verschlossen und werden zu einem sp\u00e4teren Zeitpunkt zur Analyse an das Bodenlabor geschickt.<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 19 Schematische Darstellung der Entnahme von Bodenzylindern und Durchl\u00e4ssigkeitstests<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 20 Zylinderaufnahme f\u00fcr die Bodensch\u00fcttdichte<\/p>\n\n\n\n

Die Durchl\u00e4ssigkeit des Bodens wurde mit Hilfe von Zylindern mit einem Durchmesser von 10 cm ermittelt, die bis zur vollen Tiefe in den Boden getrieben wurden, wobei 2,5 cm mit einem Holzstopfen freigelegt wurden (Abb. 21). Anschlie\u00dfend wurden 100 ml Wasser in den Zylinder gegossen, und die Gesamtinfiltrationszeit wurde mit einer Stoppuhr gemessen. Diese Messungen wurden auf den Felddatenbl\u00e4ttern festgehalten.<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 21 Messung der Durchl\u00e4ssigkeit des Bodens<\/p>\n\n\n\n

Tag 5 der \u00dcberwachung (3. Mai 2024)<\/strong> - Der Schwerpunkt lag auf dem Abschluss der Sammlung von Insektenfallen und Bodenproben. Die Insektenproben aus den gelben Schalen und den Bodenfallen wurden abgeseiht und in versiegelte Beh\u00e4lter mit Ethanol 75% umgef\u00fcllt (Abb. 22). Die Identifizierung der Insektenarten wird zu einem sp\u00e4teren Zeitpunkt durchgef\u00fchrt.<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 22 Sammlung von Insektenfallen<\/p>\n\n\n\n

Die Bodenprobenahme erfolgte nach den Richtlinien des Feldprotokolls Aufgabe 3.2, wobei von jeder Variante vier Proben in Plastikbeuteln gesammelt wurden. Jede Probe bestand aus mindestens f\u00fcnf Bohrkernen, die mit einem Egner-Probenehmer entnommen wurden (Abb. 23). Die Proben wurden bis zu einer Tiefe von 30 cm entnommen. Nach der Entnahme wurden die Bodenproben in einem Eisschrank aufbewahrt und nach der R\u00fcckkehr vom Feldbesuch tiefgefroren. Die Analysen der Bodenparameter werden zu einem sp\u00e4teren Zeitpunkt im Labor durchgef\u00fchrt.<\/p>\n\n\n\n

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Abb. 23 Bodenprobenahmeplan (oben) und eine der f\u00fcnf Teilproben (unten)<\/p>","protected":false},"excerpt":{"rendered":"

Author: Pawe\u0142 Radzikowski radzikpawe@gmail.com Day 1 of monitoring (29.04.2024): Upon arrival at the German Living Lab, Mr. Pawe\u0142 Radzikowski from Ogolnopolskie Stowarzyszenie Agrolesnictwa (OSA, Polish Agroforestry Association) met with Ms. […]<\/p>\n","protected":false},"author":1,"featured_media":3026,"comment_status":"closed","ping_status":"closed","sticky":false,"template":"","format":"standard","meta":{"site-sidebar-layout":"default","site-content-layout":"","ast-site-content-layout":"default","site-content-style":"default","site-sidebar-style":"default","ast-global-header-display":"","ast-banner-title-visibility":"","ast-main-header-display":"","ast-hfb-above-header-display":"","ast-hfb-below-header-display":"","ast-hfb-mobile-header-display":"","site-post-title":"","ast-breadcrumbs-content":"","ast-featured-img":"","footer-sml-layout":"","ast-disable-related-posts":"","theme-transparent-header-meta":"","adv-header-id-meta":"","stick-header-meta":"","header-above-stick-meta":"","header-main-stick-meta":"","header-below-stick-meta":"","astra-migrate-meta-layouts":"set","ast-page-background-enabled":"default","ast-page-background-meta":{"desktop":{"background-color":"","background-image":"","background-repeat":"repeat","background-position":"center center","background-size":"auto","background-attachment":"scroll","background-type":"","background-media":"","overlay-type":"","overlay-color":"","overlay-opacity":"","overlay-gradient":""},"tablet":{"background-color":"","background-image":"","background-repeat":"repeat","background-position":"center center","background-size":"auto","background-attachment":"scroll","background-type":"","background-media":"","overlay-type":"","overlay-color":"","overlay-opacity":"","overlay-gradient":""},"mobile":{"background-color":"","background-image":"","background-repeat":"repeat","background-position":"center center","background-size":"auto","background-attachment":"scroll","background-type":"","background-media":"","overlay-type":"","overlay-color":"","overlay-opacity":"","overlay-gradient":""}},"ast-content-background-meta":{"desktop":{"background-color":"var(--ast-global-color-4)","background-image":"","background-repeat":"repeat","background-position":"center center","background-size":"auto","background-attachment":"scroll","background-type":"","background-media":"","overlay-type":"","overlay-color":"","overlay-opacity":"","overlay-gradient":""},"tablet":{"background-color":"var(--ast-global-color-4)","background-image":"","background-repeat":"repeat","background-position":"center center","background-size":"auto","background-attachment":"scroll","background-type":"","background-media":"","overlay-type":"","overlay-color":"","overlay-opacity":"","overlay-gradient":""},"mobile":{"background-color":"var(--ast-global-color-4)","background-image":"","background-repeat":"repeat","background-position":"center center","background-size":"auto","background-attachment":"scroll","background-type":"","background-media":"","overlay-type":"","overlay-color":"","overlay-opacity":"","overlay-gradient":""}},"wds_primary_category":0,"footnotes":""},"categories":[1],"tags":[],"class_list":["post-3003","post","type-post","status-publish","format-standard","has-post-thumbnail","hentry","category-uncategorized"],"_links":{"self":[{"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/posts\/3003","targetHints":{"allow":["GET"]}}],"collection":[{"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/posts"}],"about":[{"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/types\/post"}],"author":[{"embeddable":true,"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/users\/1"}],"replies":[{"embeddable":true,"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/comments?post=3003"}],"version-history":[{"count":2,"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/posts\/3003\/revisions"}],"predecessor-version":[{"id":3039,"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/posts\/3003\/revisions\/3039"}],"wp:featuredmedia":[{"embeddable":true,"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/media\/3026"}],"wp:attachment":[{"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/media?parent=3003"}],"wp:term":[{"taxonomy":"category","embeddable":true,"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/categories?post=3003"},{"taxonomy":"post_tag","embeddable":true,"href":"http:\/\/agroreforest.eu\/de\/wp-json\/wp\/v2\/tags?post=3003"}],"curies":[{"name":"wp","href":"https:\/\/api.w.org\/{rel}","templated":true}]}}